分子生物學平臺

單細胞測序（英語：Single cell sequencing）采取優化的下一代DNA測序技術（NGS）檢測單細胞的序列，可以獲得特定微環境下的細胞序列差異以方便研究其功能差異等。對個體細胞的DNA測序可以幫助我們了解例如在癌癥中的小范圍細胞的變異；對其進行RNA測序可以幫助我們了解和鑒別不同的細胞類型與其表現的基因，對研究發育生物學等有較大裨益。
 

單細胞測序的基本流程

 
分離單細胞
在全基因組擴增和測序前，有很多方法可以分離細胞個體，其中流式細胞術（FACS）較為常用。個體細胞可以用顯微操作來收集，這樣較為快捷而且成本較低，但是比較有技術難度，而且顯微鏡下對細胞的錯誤分類容易影響實驗結果。激光捕獲顯微切割技術（LCM）亦可以用來收集單細胞。但是盡管激光捕獲顯微切割可以保留樣本細胞在組織中的空間位置，但是捕獲單細胞的時候容易連帶周圍細胞的物質。高通量的細胞個體分離還可以使用微流控技術。微流控技術和流式細胞技術都能準確而自動地分離無偏樣本。但是，兩種方法都要求首先將細胞從其為環境中脫離，因此可能在RNA表達分析中造成對轉錄數據的干擾。
 
單細胞RNA測序
單細胞RNA測序也稱scRNA-Seq。通常而言，一般的組織細胞RNA-seq實驗會產生1000萬個讀數，如果一個基因的頻率超過50RPKM，即每百萬讀數中每千個堿基中超過50個，這一基因即被認為有表達。泊松分布下，1kb長的基因有超過500個讀數和4%的最小變異系數，即CV值；哺乳動物細胞通產含有200,000個mRNA，因此至少要用50個單細胞一起才能到達最小CV值；考慮到逆轉錄的效率和環境干擾等因素，為得到準確的表達和細胞種類的識別，需要使用的細胞數量實際要更多。
 

 
測序數據分析